Scanelis https://scanelis.com/ Laboratoire d'analyses animal Mon, 18 Mar 2024 17:34:40 +0000 fr-FR hourly 1 https://wordpress.org/?v=6.5.2 https://scanelis.com/wp-content/uploads/2023/12/cropped-Plan-de-travail-3@512x-1-32x32.png Scanelis https://scanelis.com/ 32 32 Virus de la VHD et Variant (RHDV1+RHDV2) https://scanelis.com/nac/virus-maladie-hemorragique/ Mon, 18 Mar 2024 17:34:40 +0000 https://scanelis.com/?p=2332 L’article Virus de la VHD et Variant (RHDV1+RHDV2) est apparu en premier sur Scanelis.

]]>

Virus de la Maladie du Bec et des Plumes (BFDV/PBFD)

Chlamydia psittaci

Maladie de Carré du Furet

Polyomavirus des psittacidés

SARS-CoV2

Virus de la VHD et Variant (RHDV1+RHDV2)




Télécharger le formulaire PCR NAC

Détection quantitative du virus de la VHD (Viral Hemorrhagic Disease ou Maladie virale hémorragique du lapin) par RT-PCR en temps réel. Le test permet la détection et la quantification des virus :

  • VHD souche classique
  • VHD souche variant 2010

Indications du test

  • Diagnostic individuel ou en pool lors d’une suspicion clinique
  • Evaluation de la quantité de virus environnementale (cage, mangeoire…) afin d’estimer le niveau de contamination d’un site et d’adapter les mesures prophylactiques (vide sanitaire, désinfection, vaccination...)

Caractéristiques du test

Prélèvements à réaliser

  • Foie (non fixé) pour le diagnostic clinique (analyse en pool : 3 prélèvements maximum)
  • Ecouvillons environnementaux (nous consulter pour les modalités pratiques)

Interprétation du résultat

Les informations concernant les vaccins utilisés, les dates de vaccination et le contexte clinique sont nécessaires à l’interprétation du résultat et doivent être indiqués sur la fiche de demande d’analyse.

  • Résultat positif : présence du virus dans l’échantillon analysé. Interprétation en fonction de la charge virale mesurée et du contexte de l’analyse (diagnostic ou analyse environnementale).
  • Résultat négatif : absence de virus ou quantité inférieure au seuil de détection. Permet d’exclure une forme aiguë de la maladie.
Ne pas hésiter à nous consulter pour une interprétation du résultat quantitatif

L’article Virus de la VHD et Variant (RHDV1+RHDV2) est apparu en premier sur Scanelis.

]]>
Toxoplasma gondii https://scanelis.com/chiens/toxoplasma-gondii/ Tue, 27 Feb 2024 14:06:39 +0000 https://scanelis.com/?p=2184 L’article Toxoplasma gondii est apparu en premier sur Scanelis.

]]>

Bartonella

Complexe Toux de Chenil

Coronavirus canin

Cryptosporidium sp.

Giardia sp.

Hémoplasmes sanguins

Virus de l’Hépatite de Rubarth

Herpèsvirus canin

Leishmanies

Leptospires

Virus de la Maladie de Carré

Neospora caninum

Parvovirus canin

Salmonella sp.

SARS-CoV2

Toxoplasma gondii

Typage des parvovirus des carnivores

Toxoplasma gondii




Télécharger le formulaire PCR Chien

Recherche de Toxoplasma gondii par PCR en temps réel.

Indications du test

  • Diagnostic de la toxoplasmose chez le chien ou le chat présentant des signes cliniques.
  • Evaluation de l’excrétion du protozoaire chez un animal sain.

Caractéristiques du test

Prélèvements à réaliser

  • Signes nerveux : LCS ou encéphale (post-mortem).
  • Signes oculaires (uvéite) : humeur aqueuse (Tube EDTA ou sec).
  • Signes respiratoires : liquide de lavage broncho-alvéolaire ou épanchement thoracique ou poumon (post-mortem).

Interprétation du résultat

  • Résultat négatif : Absence du protozoaire ou quantité inférieure au seuil de détection de la technique.
  • Résultat positif  : La détection de Toxoplasma sur un liquide (LCS, humeur aqueuse, épanchement) confirme la maladie.
Ne pas hésiter à nous consulter pour une interprétation du résultat quantitatif

L’article Toxoplasma gondii est apparu en premier sur Scanelis.

]]>
Salmonella sp. https://scanelis.com/chiens/salmonella-sp/ Tue, 27 Feb 2024 14:00:51 +0000 https://scanelis.com/?p=2179 L’article Salmonella sp. est apparu en premier sur Scanelis.

]]>

Bartonella

Biblio PIF

Bilan PCR + Sérologie Chat

Bordetella bronchiseptica

Bornavirus félin

Calicivirus

Chlamydia

Coronavirus félin et PIF

Cryptosporidium sp.

FelV

FiV

Giardia sp.

Hémoplasmes sanguins

Herpèsvirus félin

Leishmanies

Mycoplasma felis

Parvovirus (panleucopénie/typhus)

Salmonella sp.

SARS-CoV2

Toxoplasma gondii

Tritrichomonas foetus

Typage des parvovirus des carnivores

Salmonella sp.




Télécharger le formulaire PCR Chien

Recherche de Salmonella sp. par PCR en temps réel.

Indications du test

  • Diagnostic de salmonellose chez les animaux présentant des signes cliniques (d’intensité variable de discrets à sévères pouvant aboutir à la mort, associant des signes d’entérocolite et d’endotoxémie, anorexie, hyperthermie, douleurs abdominales, diarrhée séreuse à hémorragique).
  • Détection des porteurs asymptomatiques (en particulier en collectivité si cas cliniques ou si suspicion de zoonose).

Caractéristiques du test

Prélèvements à réaliser

  • Signes digestifs : prélèvement rectal avec un écouvillon sec sans milieu de culture.
  • Détermination de statut des animaux asymptomatiques : prélèvement rectal avec un écouvillon sec.
  • Prélever si possible avant la mise en place d’un traitement antibiotique. Sinon l’indiquer sur la fiche de demande d’analyses.

Interprétation du résultat

  • Résultat négatif : Absence de la bactérie ou quantité inférieure au seuil de détection de la technique.
  • Résultat positif  : Présence de la bactérie dans le prélèvement.
    Si la quantité de bactérie est très faible, nous vous l’indiquons sur le rapport d’analyses. Les résultats positifs sont à interpréter dans le contexte clinique, en fonction de la durée d’évolution et de traitements éventuels. Le test Scanelis permet une évaluation quantitative de la charge bactérienne.
    Pour une interprétation du résultat dans un contexte clinique, il faut tenir compte d’un taux de portage qui est en général faible dans une population standard mais qui peut être plus élevé en collectivité et/ou chez les carnivores domestiques qui bénéficient d’un régime crudivore. Les charges bactériennes sont toujours faibles.
    Les cas cliniques chez les carnivores domestiques sont souvent associés à l’alimentation (régime crudivore, alimentation commerciale contaminée) mais d’autres sources, comme l’environnement, restent possibles.

Un traitement antibiotique récent ou en cours au moment du prélèvement peut modifier la sensibilité du test et/ou la charge bactérienne.

Ne pas hésiter à nous consulter pour une interprétation du résultat quantitatif

L’article Salmonella sp. est apparu en premier sur Scanelis.

]]>
Polyomavirus des psittacidés https://scanelis.com/nac/polyomavirus-psittacides/ Fri, 23 Feb 2024 16:00:16 +0000 https://scanelis.com/?p=2074 L’article Polyomavirus des psittacidés est apparu en premier sur Scanelis.

]]>

Virus de la Maladie du Bec et des Plumes (BFDV/PBFD)

Chlamydia psittaci

Maladie de Carré du Furet

SARS-CoV2

Virus de la VHD et Variant (RHDV1+RHDV2)

Polyomavirus des psittacidés




Télécharger le formulaire PCR NAC

Détection du Polyomavirus des oiseaux (Avian Polyomavirus, APV ou encore Budgerigar Fledgling Disease Virus) par PCR en temps réel.

Indications du test

  • Diagnostic de la « mue française » chez les perruches.
  • Diagnostic d’une infection à Polyomavirus en cas de mortalité brutale de jeunes Psittaciformes.
  • Diagnostic d’une infection inapparente par le polyomavirus chez un oiseau (animal porteur sain).
  • Evaluation du risque épidémiologique (mise en évidence de la circulation virale en élevage).
  • Evaluation de la contamination environnementale (cage, volière, …).

Caractéristiques du test

Prélèvements à réaliser

  • Oiseau malade :
    • vivant seul ou en collectivité : sang total EDTA (+ follicule d'une jeune plume anormale avec pulpe si troubles du plumage)
  • Oiseau asymptomatique :
    • vivant en collectivité :
      • sang total EDTA pour la détermination du statut individuel
      • écouvillon de surface par lot d'animaux (parois cage, poussières, plumes...) : contamination de l'environnement d'un (ou plusieurs) oiseau(x)
    • vivant seul : sang total EDTA

Interprétation du résultat

  • Positif  : Compatible avec une "mue française" ou du portage asymptomatique. Contamination de l’environnement (écouvillons de surface)
  • Positif à la limite du seuil de détection ou charge virale faible / très faible  : Compatible avec du portage sain, une infection débutante ou avec une contamination environnementale du prélèvement biologique
  • Négatif  : Absence de Polyomavirus ou quantité de virus inférieure au seuil de détection du test.
Ne pas hésiter à nous consulter pour une interprétation du résultat quantitatif

L’article Polyomavirus des psittacidés est apparu en premier sur Scanelis.

]]>
Maladie de Carré du Furet https://scanelis.com/nac/maladie-carre-furet/ Fri, 23 Feb 2024 15:36:50 +0000 https://scanelis.com/?p=2070 L’article Maladie de Carré du Furet est apparu en premier sur Scanelis.

]]>

Virus de la Maladie du Bec et des Plumes (BFDV/PBFD)

Chlamydia psittaci

Polyomavirus des psittacidés

SARS-CoV2

Virus de la VHD et Variant (RHDV1+RHDV2)

Maladie de Carré du Furet




Télécharger le formulaire PCR NAC

Analyse quantitative et typage de souches (vaccinales/infectieuses) permettant un diagnostic de certitude sur des animaux récemment vaccinés, quel que soit le vaccin utilisé (souches vaccinales disponibles sur le marché vétérinaire français).

Indications du test

  • Diagnostic de la maladie de Carré chez le chien, le furet.
  • Suivi post diagnostic.
  • Evaluation du risque épidémiologique (mise en évidence de la circulation virale en collectivité).

Caractéristiques du test

  • PCR en temps réel
  • Seuil de détection
  • Analyse quantitative (sur demande, nous contacter)
  • Typage de TOUTES les souches vaccinales (distinction des souches infectieuses de toutes les souches vaccinales disponibles sur le marché vétérinaire français).

Prélèvements à réaliser

  • Sang sur EDTA (quelle que soit la forme clinique)
  • Sang et LCR sur EDTA pour les formes nerveuses pures
  •  Sang sur EDTA et cellules conjonctivales ou oro-pharyngées (écouvillons) en présence de signes respiratoires (possibilité de réaliser également un diagnostic de toux de chenil)
  • Rein, rate, foie, poumon en post-mortem (non fixés)
    Dans les formes chroniques, il est recommandé de faire plusieurs prélèvements (sang et autre prélèvement en fonction des signes cliniques).
  • Suivi post-diagnostic, il est préférable de rechercher le virus sur un mélange de prélèvements (sang, urine, cellules conjonctivales et oro-pharyngées).

Interprétation du résultat

Les informations concernant les vaccins utilisés ainsi que les dates de vaccination sont nécessaires à l’interprétation du résultat (à indiquer sur la fiche de demande d’analyses).

  • Résultat positif  : Compatible avec une maladie de Carré ou une circulation virale.
  • Faible charge de virus vaccinal  : Mise en évidence de la souche vaccinale, probablement liée à une vaccination récente.
  • Résultat négatif : Absence de virus de Carré dans le prélèvement ou quantité inférieure au seuil de détection. Permet d’exclure une forme aiguë de maladie de Carré.
Ne pas hésiter à nous consulter pour une interprétation du résultat quantitatif

L’article Maladie de Carré du Furet est apparu en premier sur Scanelis.

]]>
Chlamydia psittaci https://scanelis.com/nac/chlamydia-psittaci/ Thu, 22 Feb 2024 12:08:23 +0000 https://scanelis.com/?p=2064 L’article Chlamydia psittaci est apparu en premier sur Scanelis.

]]>

Virus de la Maladie du Bec et des Plumes (BFDV/PBFD)

Maladie de Carré du Furet

Polyomavirus des psittacidés

SARS-CoV2

Virus de la VHD et Variant (RHDV1+RHDV2)

Chlamydia psittaci




Télécharger le formulaire PCR NAC

Détection de Chlamydophila psittaci par PCR en temps réel.

Indications du test

  • Diagnostic d’une Chlamydiose (Ornithose) chez un oiseau.
  •  Détection des animaux excréteurs sains.
  • Evaluation du risque épidémiologique (mise en évidence de la circulation bactérienne en élevage).
  • Evaluation de la contamination environnementale (cage, volière..).
  • Evaluation du risque zoonotique (Psittacose) : charge de Chlamydophila excrétée par l’animal infecté.

Caractéristiques du test

Prélèvements à réaliser

  • Animal malade : cellules conjonctivales, choanales ou cloacales (écouvillons secs et / ou cytobrosses).
  • Animal sain : cellules cloacales (écouvillon sec).

Interprétation du résultat

Le résultat de l’analyse PCR doit toujours être interprété dans le contexte clinique ou épidémiologique.

  • Résultat positif : Compatible avec une Chlamydiose ou un portage asymptomatique. Risque zoonotique potentiel.
  • Résultat négatif  : Absence de Chlamydophila ou quantité de cette bactérie inférieure au seuil de détection du test. Permet d’exclure une Chlamydiose chez un animal présentant des signes cliniques si les prélèvements adéquats ont été réalisés.
Ne pas hésiter à nous consulter pour une interprétation du résultat quantitatif

L’article Chlamydia psittaci est apparu en premier sur Scanelis.

]]>
Virus de la Maladie de Carré https://scanelis.com/chiens/maladie-carre/ Thu, 22 Feb 2024 11:47:11 +0000 https://scanelis.com/?p=2055 L’article Virus de la Maladie de Carré est apparu en premier sur Scanelis.

]]>

Bartonella

Complexe Toux de Chenil

Coronavirus canin

Cryptosporidium sp.

Giardia sp.

Hémoplasmes sanguins

Virus de l’Hépatite de Rubarth

Herpèsvirus canin

Leishmanies

Leptospires

Virus de la Maladie de Carré

Neospora caninum

Parvovirus canin

Salmonella sp.

SARS-CoV2

Toxoplasma gondii

Typage des parvovirus des carnivores

Virus de la Maladie de Carré




Télécharger le formulaire PCR Chien

Analyse quantitative et typage de souches (vaccinales/infectieuses) permettant un diagnostic de certitude sur des animaux récemment vaccinés, quel que soit le vaccin utilisé (souches vaccinales disponibles sur le marché vétérinaire français).

Indications du test

  • Diagnostic de la maladie de Carré chez le chien, le furet.
  • Suivi post diagnostic.
  • Evaluation du risque épidémiologique (mise en évidence de la circulation virale en collectivité).

Caractéristiques du test

Prélèvements à réaliser

  • Sang sur EDTA (quelle que soit la forme clinique)
  • Sang et LCR sur EDTA pour les formes nerveuses pures
  • Sang sur EDTA et cellules conjonctivales ou oro-pharyngées (écouvillons) en présence de signes respiratoires (possibilité de réaliser également un diagnostic de toux de chenil)
  • Rein, rate, foie, poumon en post-mortem (non fixés)
    Dans les formes chroniques, il est recommandé de faire plusieurs prélèvements (sang et autre prélèvement en fonction des signes cliniques).
  • Pour le suivi post-diagnostic, il est préférable de rechercher le virus sur un mélange de prélèvements (sang, urine, cellules conjonctivales et oro-pharyngées).

Interprétation du résultat

  • Résultat négatif : Absence de virus de Carré dans le prélèvement ou quantité inférieure au seuil de détection. Permet d’exclure une forme aiguë de maladie de Carré.
  • Résultat positif  : Compatible avec une maladie de Carré ou une circulation virale
  • Faible charge de virus vaccinal  : mise en évidence de la souche vaccinale, probablement liée à une vaccination récente.

Les informations concernant les vaccins utilisés ainsi que les dates de vaccination sont nécessaires à l’interprétation du résultat (à indiquer sur la fiche de demande d’analyses).

Ne pas hésiter à nous consulter pour une interprétation du résultat quantitatif

L’article Virus de la Maladie de Carré est apparu en premier sur Scanelis.

]]>
Virus de l’Hépatite de Rubarth https://scanelis.com/chiens/hepatite-rubarth/ Tue, 20 Feb 2024 12:17:02 +0000 https://scanelis.com/?p=2051 L’article Virus de l’Hépatite de Rubarth est apparu en premier sur Scanelis.

]]>

Bartonella

Complexe Toux de Chenil

Coronavirus canin

Cryptosporidium sp.

Giardia sp.

Hémoplasmes sanguins

Virus de l’Hépatite de Rubarth

Herpèsvirus canin

Leishmanies

Leptospires

Virus de la Maladie de Carré

Neospora caninum

Parvovirus canin

Salmonella sp.

SARS-CoV2

Toxoplasma gondii

Typage des parvovirus des carnivores

Virus de l’Hépatite de Rubarth




Télécharger le formulaire PCR Chien

Recherche de l’Adénovirus canin de type 1 par PCR en temps réel.

Indications du test

  • Diagnostic de l’hépatite infectieuse canine ou maladie de Rubarth.
  • Détection des excréteurs asymptomatiques.

Caractéristiques du test

Prélèvements à réaliser

  • Diagnostic de l’hépatite de Rubarth :
    • sur animal vivant : sang total (EDTA) puis en fonction des signes clinqiues, les prélèvements suivants peuvent être ajoutés : urines, LCS, biopsies hépatiques (tube EDTA ou sec).
    • sur animal mort : foie (tube EDTA ou sec).
  • Détermination de statut des animaux sains : urines (tube EDTA ou sec). Le sang total (EDTA) peut être analysé en complément des urines.

Interprétation du résultat

  • Résultat négatif : Absence du virus ou quantité inférieure au seuil de détection de la technique.
  • Résultat positif  :
    • Sur un animal cliniquement suspect, une charge élevée du virus permet de conclure à une hépatite de Rubarth.
    • Sur un animal sain, dans le cadre d’un suivi post maladie par exemple, un résultat positif sur urines confirme l’excrétion persistante du virus qui peut durer plusieurs mois après guérison.
Ne pas hésiter à nous consulter pour une interprétation du résultat quantitatif

L’article Virus de l’Hépatite de Rubarth est apparu en premier sur Scanelis.

]]>
Parvovirus canin https://scanelis.com/chiens/parvovirus-canin/ Tue, 20 Feb 2024 11:55:42 +0000 https://scanelis.com/?p=2040 L’article Parvovirus canin est apparu en premier sur Scanelis.

]]>

Bartonella

Complexe Toux de Chenil

Coronavirus canin

Cryptosporidium sp.

Giardia sp.

Hémoplasmes sanguins

Virus de l’Hépatite de Rubarth

Herpèsvirus canin

Leishmanies

Leptospires

Virus de la Maladie de Carré

Neospora caninum

Parvovirus canin

Salmonella sp.

SARS-CoV2

Toxoplasma gondii

Typage des parvovirus des carnivores

Parvovirus canin




Télécharger le formulaire PCR Chien

Détection quantitative (PCR en temps réel) du parvovirus permettant un diagnostic de certitude de la parvovirose canine y compris chez un animal récemment vacciné en particulier avec des vaccins à haut titre viral.

Indications du test

  • Diagnostic de la parvovirose canine.
  • Evaluation du risque épidémiologique (mise en évidence de la circulation virale en élevage).
  • Evaluation de la contamination environnementale et suivi de décontamination en milieu infecté.

Caractéristiques du test

Prélèvements à réaliser

  • Ecouvillon rectal (même en post mortem, écouvillon sec sans milieu de transport).
  •  Ecouvillon environnemental.

Interprétation du résultat

La plupart des chiens sont porteurs de parvovirus en quantité plus ou moins importante en collectivité. La présence de virus, qu’il soit sauvage ou d’origine vaccinale ne permet pas de poser un diagnostic de certitude en l’absence de quantification de la charge virale excrétée. Les résultats quantitatifs doivent être interprétés dans un contexte clinique et épidémiologique.

  • Résultat négatif : Absence de virus ou quantité inférieure au seuil de détection de la méthode.
  • Résultat positif  :
    • Charge virale faible ou très faible : portage de virus ou trace vaccinale. Ce résultat permet d’exclure une parvovirose.
    • Charge virale moyenne : éventuellement compatible avec une vaccination récente avec un vaccin à haut titre viral. Le plus souvent les charges moyennes sont rencontrées dans les cas de co-infection parvovirus/coronavirus ou lors de formes subaiguës de parvovirose (évolution > 10 jours).
    • Charge virale élevée ou très élevée : compatible avec une parvovirose. De telles charges peuvent être également trouvées dans de rares cas sur des animaux asymptomatiques en collectivité très contaminée (présence de cas cliniques).
Ne pas hésiter à nous consulter pour une interprétation du résultat quantitatif

L’article Parvovirus canin est apparu en premier sur Scanelis.

]]>
Neospora caninum https://scanelis.com/chiens/neospora-caninum/ Mon, 19 Feb 2024 17:51:07 +0000 https://scanelis.com/?p=2031 L’article Neospora caninum est apparu en premier sur Scanelis.

]]>

Bartonella

Complexe Toux de Chenil

Coronavirus canin

Cryptosporidium sp.

Giardia sp.

Hémoplasmes sanguins

Virus de l’Hépatite de Rubarth

Herpèsvirus canin

Leishmanies

Leptospires

Virus de la Maladie de Carré

Neospora caninum

Parvovirus canin

Salmonella sp.

SARS-CoV2

Toxoplasma gondii

Typage des parvovirus des carnivores

Neospora caninum




Télécharger le formulaire PCR Chien

Recherche de Neospora caninum par PCR en temps réel.

Indications du test

  • Diagnostic de la neosporose chez le jeune chien (très souvent avant 10 mois) présentant des signes cliniques nerveux avec parésie des membres postérieurs évoluant vers une paralysie évolutive, ataxie, myalgies, signes de méninogencéphalomyélite. La néosporose provoque également des troubles de la reproduction chez la femelle avec résorption embryonnaire ou fœtale, avortement (à partir de 45 jours), mortinatalité.

Caractéristiques du test

Prélèvements à réaliser

  • Signes nerveux : LCS ou encéphale (post-mortem), biopsie musculaire.
  • Troubles de la reproduction : poumon, foie, rein, rate des avortons, placenta.

Interprétation du résultat

  • Résultat négatif : Absence du protozoaire ou quantité inférieure au seuil de détection de la technique.
  • Résultat positif  : La détection de Neospora caninum dans le LCS, les muscles ou l’encéphale confirme la maladie lors d’évolution de troubles nerveux. Dans un contexte de troubles de la reproduction, la détection de Neospora caninum dans le placenta et/ou les organes des avortons est en faveur de son rôle pathogène. Les quantités de parasites dans les LCS sont souvent faibles, en revanche dans les tissus, en particulier les muscles il est fréquent de trouver des charges parasitaires importantes.
Ne pas hésiter à nous consulter pour une interprétation du résultat quantitatif

L’article Neospora caninum est apparu en premier sur Scanelis.

]]>